产品概述
NanoTrans™ Transfection Reagent plus是一种多用途的脂质体,用于向几乎所有常见细胞系和多种难以转染的细胞系中进行DNA、siRNA和mRNA的转染。并支持快速转染程序,可以缩短您的转染时间,适配高通量、自动化筛选。
产品优势
通用 | DNA、siRNA、mRNA都可以
高效 | 支持快速转染程序,缩短实验时间
普适 | 转染效果经过100+种细胞系验证
产品性能 | 数据展示产品性能 | 数据展示产品性能 | 数据展示
质粒DNA转染:

图. 96孔板中转染不同的细胞系,对比NanoTrans和Li****的转染效率,每孔中转染100ng 的GFP质粒,24小时后荧光拍照。
siRNA转染:

图. 96孔板中转染不同的细胞系,对比NanoTrans和Li****的转染效率,每孔中转染5pmol 的Cy3-siRNA质粒,24小时后荧光拍照。
siRNA敲低效率:

图. 24孔板中转染不同的细胞系,对比NanoTrans和Li****的转染效率,每孔中转染40pmol 的GAPDH siRNA,48小时qPCR检测GAPDH相对于Actin的mRNA表达量。
mRNA转染:

图. 不同细胞分别用CT0005试剂转染mRNA-mCherry或mRNA-eGFP,CT0005在各种细胞类型中都表现亮眼。
细胞毒性:

图. 96孔板中转染不同的细胞系,对比NanoTrans和Li****的细胞毒性,每孔中转染以不同的DNA:脂质体(μg : μL)比例转染A549细胞,24小时后用CCK-8检测细胞活力。
批次稳定性

图. 对比测试3个批次转染试剂的转染效率,293T 细胞,24孔板中转染500ng 的β-gal质粒,24小时检测β-gal的酶活。
37℃热稳定性

图. 对比NanoTrans和Li****的热稳定性,将产品在37℃放置1周后,24孔板中转染500ng Luciferase 质粒,24小时后检测 Luciferase 活力。
部分客户案例:

客户案例:对比CT0005和L***2000转染GFP质粒至CT26结肠癌细胞,荧光强度也明显,细胞毒性感觉差不多,满足是实验需求。

客户案例:使用CT0005和je***ime转染GFP质粒至CT26和DLD1结直肠腺癌细胞,以及U2OS人骨肉瘤细胞,24h和48后观察荧光表达情况。

客户测试:对比CT0005、L***3000和PEI转染GFP质粒至斑马鱼细胞,荧光显微镜检测转染效率。
已发表文章
Zhou, W. et al. Targeting USP1 Potentiates Radiation-Induced Type I IFN-Dependent Antitumor Immunity by Enhancing Oligo-Ubiquitinated SAR1A-Mediated STING Trafficking and Activation. Advanced science 12, e2412687 (2025). IF=14.3
Yuan, S. et al. Identification of novel B-cell neutralizing epitopes in goose Astrovirus type 2. Veterinary microbiology 313, 110874 (2026).IF=2.7
质量规格
| 适用于 | DNA/siRNA/mRNA转染 |
| 储存方式 | 2-8ºC保存,不可冷冻 |
| 血清兼容性 | 是 |
| 产品形式 | 液体 |
| 是否避光 | 否 |
产品概述
NanoTrans™ Transfection Reagent plus是一种多用途的脂质体,用于向几乎所有常见细胞系和多种难以转染的细胞系中进行DNA、siRNA和mRNA的转染。并支持快速转染程序,可以缩短您的转染时间,适配高通量、自动化筛选。
产品优势
通用 | DNA、siRNA、mRNA都可以
高效 | 支持快速转染程序,缩短实验时间
普适 | 转染效果经过100+种细胞系验证
产品性能 | 数据展示产品性能 | 数据展示产品性能 | 数据展示
质粒DNA转染:

图. 96孔板中转染不同的细胞系,对比NanoTrans和Li****的转染效率,每孔中转染100ng 的GFP质粒,24小时后荧光拍照。
siRNA转染:

图. 96孔板中转染不同的细胞系,对比NanoTrans和Li****的转染效率,每孔中转染5pmol 的Cy3-siRNA质粒,24小时后荧光拍照。
siRNA敲低效率:

图. 24孔板中转染不同的细胞系,对比NanoTrans和Li****的转染效率,每孔中转染40pmol 的GAPDH siRNA,48小时qPCR检测GAPDH相对于Actin的mRNA表达量。
mRNA转染:

图. 不同细胞分别用CT0005试剂转染mRNA-mCherry或mRNA-eGFP,CT0005在各种细胞类型中都表现亮眼。
细胞毒性:

图. 96孔板中转染不同的细胞系,对比NanoTrans和Li****的细胞毒性,每孔中转染以不同的DNA:脂质体(μg : μL)比例转染A549细胞,24小时后用CCK-8检测细胞活力。
批次稳定性

图. 对比测试3个批次转染试剂的转染效率,293T 细胞,24孔板中转染500ng 的β-gal质粒,24小时检测β-gal的酶活。
37℃热稳定性

图. 对比NanoTrans和Li****的热稳定性,将产品在37℃放置1周后,24孔板中转染500ng Luciferase 质粒,24小时后检测 Luciferase 活力。
部分客户案例:

客户案例:对比CT0005和L***2000转染GFP质粒至CT26结肠癌细胞,荧光强度也明显,细胞毒性感觉差不多,满足是实验需求。

客户案例:使用CT0005和je***ime转染GFP质粒至CT26和DLD1结直肠腺癌细胞,以及U2OS人骨肉瘤细胞,24h和48后观察荧光表达情况。

客户测试:对比CT0005、L***3000和PEI转染GFP质粒至斑马鱼细胞,荧光显微镜检测转染效率。
已发表文章
Zhou, W. et al. Targeting USP1 Potentiates Radiation-Induced Type I IFN-Dependent Antitumor Immunity by Enhancing Oligo-Ubiquitinated SAR1A-Mediated STING Trafficking and Activation. Advanced science 12, e2412687 (2025). IF=14.3
Yuan, S. et al. Identification of novel B-cell neutralizing epitopes in goose Astrovirus type 2. Veterinary microbiology 313, 110874 (2026).IF=2.7
质量规格
| 适用于 | DNA/siRNA/mRNA转染 |
| 储存方式 | 2-8ºC保存,不可冷冻 |
| 血清兼容性 | 是 |
| 产品形式 | 液体 |
| 是否避光 | 否 |
1. 这款转染试剂能不能做稳转?
瞬转:质粒进去 → 不整合 → 几天就丢
稳转 = 稳定转染 / 稳定表达细胞株。稳转是 “整合 + 筛选” 的结果,不是试剂决定的。
就是把外源基因永久整合到细胞基因组里,让细胞能长期、稳定地表达这个基因,不会随着细胞传代而丢失。
质粒进去 → 随机整合进基因组 → 药物筛选留下阳性克隆,更多的是转染的只需要有整合原件和筛选抗性。
对于转染试剂来说,转染试剂只管 “把质粒送进细胞”,不管 “能不能稳转”。
2. 如何做稳转?
慢病毒、质粒与转座子系统均可将外源基因整合至宿主基因组,但三者的整合效率、操作方式及适用场景差异显著。慢病毒自带整合酶系统,能高效实现基因整合,
对多种细胞均有良好适配性;质粒 DNA 的整合概率极低(通常 < 1%),且高度依赖细胞类型;转座子系统(如 Sleeping Beauty、PiggyBac)则通过转座酶介导剪
切 - 粘贴机制,大幅提升整合效率,介于质粒随机整合与慢病毒之间。同时,想要实现稳转,质粒、转座子载体均需携带抗性基因,通过长期药物筛选淘汰未整合细
胞,其中质粒稳转成功率低且对细胞损伤较大,而转座子系统可显著提高阳性克隆获得率,无需构建病毒,操作更简便安全。所以,常规化学转染试剂(如脂质体、
PEI、磷酸钙)主要用于瞬时转染,若追求高效便捷且不愿操作病毒,转座子系统是构建稳转株的优质选择,而稳定转染最常用的方法仍是慢病毒感染。无论是质粒、
转座子还是慢病毒构建稳转细胞株,载体都需要含有抗性基因,后期通过一定时间的药物筛选,把没有转进目的基因的细胞杀死,保存下来的细胞都是成功整合了目
的基因、能够稳定遗传的细胞。
总结:
想简单高效、细胞难转 → 用慢病毒。
不想碰病毒、细胞好转(293、Hela 等) → 质粒转染 + 筛选。
想要稳定均一、适合发文章 → 转座子 或 CRISPR 定点整合。
3. 转染后通过什么方式检测表达?
检测方法取决于您的实验目的:
效率评估:若质粒带GFP等荧光标签,可在转染后24-48小时用荧光显微镜观察或流式细胞仪定量(最直观)。
mRNA水平:转染后24-48小时,提取RNA进行qRT-PCR。
蛋白水平:转染后48-72小时,裂解细胞进行Western Blot。注意:荧光强弱不代表目的蛋白表达量,WB才是金标准。
4. 转染过程中能不能加血清加抗生素?
血清:建议在复合物形成阶段(稀释转染试剂/DNA时)使用无血清培养基。形成后加入细胞时,可以含血清(多数血清不影响),但若细胞特别敏感,建议使用Opti-MEM等低血清培养基;
抗生素(如青霉素/链霉素):对于大部分细胞来说不影响,但对于敏感细胞来说建议不要加。抗生素会增加细胞膜通透性导致细胞毒性,且会干扰后续的稳转筛选(如青霉素会竞争性抑制G418效果)
5. 转染试剂能不能放-20?
请务必查看说明书!
大多数脂质体转染试剂(如我们这款):严禁冷冻。冷冻会破坏脂质体结构,导致团聚和效率丧失,必须4℃保存。
建议:若不慎冷冻,解冻后若出现沉淀或浑浊,请勿使用。
6. 转染试剂转染后需要换液吗?
视细胞状态和试剂毒性而定:
不需要换液:如果细胞状态良好(如HEK293、CHO细胞),转染后4-8小时无需换液,后续可根据培养基营养消耗情况及时补液或换液。
建议换液:如果细胞比较脆弱,建议转染后4-6小时更换为含血清的新鲜完全培养基,以降低脂质体毒性 。
7. 这款转染试剂的转染效率多少,毒性如何?
效率:在HEK293/CHO等常规细胞中,效率通常>80%(如GFP阳性率);在难转染细胞中可能降至30%-60%,建议优化DNA/试剂比例。
毒性:我们的设计力求低毒,但肉眼可见的细胞死亡通常与DNA质量差、试剂用量过高或转染时细胞汇合度太低有关。建议梯度摸索最佳用量。
8. 转染效率很低,可能是什么原因?
请按以下清单排查:
细胞状态:细胞状态对于转染效率影响特别大,代数太高(>30代)或支原体污染(隐形杀手)是主因。转染时汇合度应在70%-90%。
DNA质量:OD260/280 应在1.8左右,且内毒素含量必须很低(内毒素会杀死细胞)。
复合物形成:转染复合物需室温静置10-15分钟,且不要 Vortex(涡旋振荡会破坏脂质体)
9. 转染后细胞死了很多,怎么优化?
细胞状态:转染前细胞状态是否正常,转让前细胞状态不正常,转染后细胞更加容易死亡。
降低用量:按说明书最低推荐量进行梯度尝试(如0.5μl、1μl、2μl/孔)。
缩短作用时间:转染复合物加入细胞后,4小时后即可换液,不要过夜。
铺板密度:细胞融合度过低(<50%)时贴壁不牢,对毒性更敏感,提高转染时细胞密度。
10. 转染后细胞形态变了(变圆、漂浮),正常吗?
轻微变化:部分细胞在转染后出现轻微变圆或漂浮是正常现象(脂质体进入细胞时的应激反应),通常24小时后会恢复正常贴壁和伸展。
严重变化:若大面积漂浮且不贴壁,说明细胞毒性过高,请参考第9条进行优化,或立即换液