产品概述
NanoTrans™ Transfection Reagent 3000是一款多用途的脂质体,能够与DNA或RNA形成脂质复合物,转染多种不同的贴壁或悬浮细胞。与CT0005相比,具有更小的毒性,在一些难以转染的细胞和常规细胞上表现出更高的转染效率。
产品性能 | 数据展示


已发表文章:
1. Liu, Q. et al. Xanthatin Targets CISD1 to Drive Ferroptosis and Mitophagy as a Dual Anticancer Strategy in Triple-Negative Breast Cancer. Advanced science , e20051 (2026). IF=14.1
2. Gao, D., Wu, Z., Zhou, Z. & Liang, J. BACH1-mediated transcriptional repression of pro-angiogenic factors drives angiogenic impairment in hypertension. Frontiers in cardiovascular medicine 13, 1769747 (2026). IF=3
| 数据展示产品性能 | 数据展示
质量规格
| 适用于 | DNA/siRNA/mRNA转染 |
| 储存方式 | 2-8ºC保存,不可冷冻 |
| 血清兼容性 | 是 |
| 产品形式 | 液体 |
| 是否避光 | 否 |
1. 这款转染试剂能不能做稳转?
瞬转:质粒进去 → 不整合 → 几天就丢
稳转 = 稳定转染 / 稳定表达细胞株。稳转是 “整合 + 筛选” 的结果,不是试剂决定的。
就是把外源基因永久整合到细胞基因组里,让细胞能长期、稳定地表达这个基因,不会随着细胞传代而丢失。
质粒进去 → 随机整合进基因组 → 药物筛选留下阳性克隆,更多的是转染的只需要有整合原件和筛选抗性。
对于转染试剂来说,转染试剂只管 “把质粒送进细胞”,不管 “能不能稳转”。
2. 如何做稳转?
慢病毒、质粒与转座子系统均可将外源基因整合至宿主基因组,但三者的整合效率、操作方式及适用场景差异显著。慢病毒自带整合酶系统,能高效实现基因整合,
对多种细胞均有良好适配性;质粒 DNA 的整合概率极低(通常 < 1%),且高度依赖细胞类型;转座子系统(如 Sleeping Beauty、PiggyBac)则通过转座酶介导剪
切 - 粘贴机制,大幅提升整合效率,介于质粒随机整合与慢病毒之间。同时,想要实现稳转,质粒、转座子载体均需携带抗性基因,通过长期药物筛选淘汰未整合细
胞,其中质粒稳转成功率低且对细胞损伤较大,而转座子系统可显著提高阳性克隆获得率,无需构建病毒,操作更简便安全。所以,常规化学转染试剂(如脂质体、
PEI、磷酸钙)主要用于瞬时转染,若追求高效便捷且不愿操作病毒,转座子系统是构建稳转株的优质选择,而稳定转染最常用的方法仍是慢病毒感染。无论是质粒、
转座子还是慢病毒构建稳转细胞株,载体都需要含有抗性基因,后期通过一定时间的药物筛选,把没有转进目的基因的细胞杀死,保存下来的细胞都是成功整合了目
的基因、能够稳定遗传的细胞。
总结:
想简单高效、细胞难转 → 用慢病毒。
不想碰病毒、细胞好转(293、Hela 等) → 质粒转染 + 筛选。
想要稳定均一、适合发文章 → 转座子 或 CRISPR 定点整合。
3. 转染后通过什么方式检测表达?
检测方法取决于您的实验目的:
效率评估:若质粒带GFP等荧光标签,可在转染后24-48小时用荧光显微镜观察或流式细胞仪定量(最直观)。
mRNA水平:转染后24-48小时,提取RNA进行qRT-PCR。
蛋白水平:转染后48-72小时,裂解细胞进行Western Blot。注意:荧光强弱不代表目的蛋白表达量,WB才是金标准。
4. 转染过程中能不能加血清加抗生素?
血清:建议在复合物形成阶段(稀释转染试剂/DNA时)使用无血清培养基。形成后加入细胞时,可以含血清(多数血清不影响),但若细胞特别敏感,建议使用Opti-MEM等低血清培养基;
抗生素(如青霉素/链霉素):对于大部分细胞来说不影响,但对于敏感细胞来说建议不要加。抗生素会增加细胞膜通透性导致细胞毒性,且会干扰后续的稳转筛选(如青霉素会竞争性抑制G418效果)
5. 转染试剂能不能放-20?
请务必查看说明书!
大多数脂质体转染试剂(如我们这款):严禁冷冻。冷冻会破坏脂质体结构,导致团聚和效率丧失,必须4℃保存。
建议:若不慎冷冻,解冻后若出现沉淀或浑浊,请勿使用。
6. 转染试剂转染后需要换液吗?
视细胞状态和试剂毒性而定:
不需要换液:如果细胞状态良好(如HEK293、CHO细胞),转染后4-8小时无需换液,后续可根据培养基营养消耗情况及时补液或换液。
建议换液:如果细胞比较脆弱,建议转染后4-6小时更换为含血清的新鲜完全培养基,以降低脂质体毒性 。
7. 这款转染试剂的转染效率多少,毒性如何?
效率:在HEK293/CHO等常规细胞中,效率通常>80%(如GFP阳性率);在难转染细胞中可能降至30%-60%,建议优化DNA/试剂比例。
毒性:我们的设计力求低毒,但肉眼可见的细胞死亡通常与DNA质量差、试剂用量过高或转染时细胞汇合度太低有关。建议梯度摸索最佳用量。
8. 转染效率很低,可能是什么原因?
请按以下清单排查:
细胞状态:细胞状态对于转染效率影响特别大,代数太高(>30代)或支原体污染(隐形杀手)是主因。转染时汇合度应在70%-90%。
DNA质量:OD260/280 应在1.8左右,且内毒素含量必须很低(内毒素会杀死细胞)。
复合物形成:转染复合物需室温静置10-15分钟,且不要 Vortex(涡旋振荡会破坏脂质体)
9. 转染后细胞死了很多,怎么优化?
细胞状态:转染前细胞状态是否正常,转让前细胞状态不正常,转染后细胞更加容易死亡。
降低用量:按说明书最低推荐量进行梯度尝试(如0.5μl、1μl、2μl/孔)。
缩短作用时间:转染复合物加入细胞后,4小时后即可换液,不要过夜。
铺板密度:细胞融合度过低(<50%)时贴壁不牢,对毒性更敏感,提高转染时细胞密度。
10. 转染后细胞形态变了(变圆、漂浮),正常吗?
轻微变化:部分细胞在转染后出现轻微变圆或漂浮是正常现象(脂质体进入细胞时的应激反应),通常24小时后会恢复正常贴壁和伸展。
严重变化:若大面积漂浮且不贴壁,说明细胞毒性过高,请参考第9条进行优化,或立即换液
11. 转染试剂可以转染siRNA吗?
可以,说明书中有siRNA转染步骤,和质粒转染步骤不同,不需要enhancer;
12. 转染试剂可以转染mRNA吗?
可以,说明书中有mRNA转染步骤,和质粒转染步骤不同,不需要enhancer。而且效果非常好,产品详情页有案例。
13. siRNA的用量如何计算?
说明书中的20μM指的是20μM/L=20μM=20μmol/L=20nmol/mL=20pmol/μL。24孔板每孔转20pmol的话,就是1μL;